用于測量嚙齒動物疼痛模型中關節、肌肉、尾巴等部位機械壓痛閾值的一種新穎、易于使用的工具。設備可直接量化對動物機械壓痛后的動物反應，專為關節疼痛的機械刺激評估而設計并得到驗證，適合于關節炎等方面的應用。

關節的慢性衰弱性疼痛與炎癥侵襲有關。此前在動物模型中對關節炎疼痛的量化主要采用間接的方法如動物體重分布（雙足平衡法）。間接式方法雖然與關節的程度有較好的相關性，但是無法確定疼痛閾值。

Ugo Basile壓力應用測試儀可直接量化刺激關節動物的反應，并自動讀取閾值大小。操作者只需將特定力傳感器佩戴在拇指上，向大鼠或小鼠關節等測試部位施加壓力，觀察并測量動物反應（通常是四肢縮回）及疼痛閾值。

主機可設置0-500g、0-1500g不同量程范圍，測試靈敏度0.1g，適用于各種物種及應用情境。軟件能夠將實驗人員壓力施加過程實現可視化觀察，提高壓力施加的可控性和可重復性。

優勢特征：

一、平面探頭設計，精確捕捉真實關節閾

在關節炎疼痛研究中，von Frey纖維絲、電子刺痛儀等刺痛方式可能會激淺表皮膚神經末梢的痛覺而非真實深層關節疼痛過敏，PAM平面探頭提高關節過敏測試的準確性。按壓方式模擬人體關節壓痛研究，是動物疼痛測試技術性創新，在藥物鎮痛和篩選方面應用廣。

二、可設置自動、手動記錄方式，存儲容量大

對測試部位進行按壓時，一旦動物出現縮足反應，測試結束，電子控制器實時記錄測試結果并保存，存儲容量可達上千個。PAM的另一個獨特設計為實時手動記錄踏板，在特定情況需要手動記錄時，研究者可自行踩下踏板結束測試，并保存數據。

三、可設定施力斜率，施力曲線可直觀比較

斜率當力以線性增加穩定情況，將恒定的斜率視為參考值，用戶在施力時可嘗試匹配設定施力斜率，可提高實驗結果準確度。多個測試結束后，軟件可形成力隨時間變化的曲線圖，可將數據保存為Excle格式，再由市面上大多數可用的統計分析軟件進行分析。

四、拓展性強，應用范圍廣。

PAM可進行其他動物如兔子、豚鼠等動物進行關節測試。選配鼠爪壓力器，可將PAM快速轉化為Randall-Selitto壓痛法，測試各類動物的爪子、尾巴、肌肉疼痛情況。

軟件測試：

應用領域：

壓力應用測試儀已用于多物種的關節、肌肉、尾巴等部位的損傷和炎癥模型中，如風濕病、外周動脈疾病、肌肉痛、神經病變、運動功能障礙，可幫助進行疼痛分子研究和異常性疼痛、痛覺過敏的藥物篩選。

型號規格：

參考文獻：

1.Mlost J, Kac P, K?dziora M, Starowicz K. Antinociceptive and chondroprotective effects of prolonged β-caryophyllene treatment in the animal model of osteoarthritis: Focus on tolerance development. Neuropharmacology. 2022;204:108908. doi:10.1016/j.neuropharm.2021.108908

2.Ishihara S, Obeidat AM, Wokosin DL, et al. The role of intra-articular neuronal CCR2 receptors in knee joint pain associated with experimental osteoarthritis in mice. Arthritis Res Ther. 2021;23(1):103. Published 2021 Apr 7. doi:10.1186/s13075-021-02486-y

3.Zaki S, Smith MM, Little CB. Pathology-pain relationships in different osteoarthritis animal model phenotypes: it matters what you measure, when you measure, and how you got there. Osteoarthritis Cartilage. 2021;29(10):1448-1461. doi:10.1016/j.joca.2021.03.023

4.Tschon M, Salamanna F, Martini L, et al. Boosting the Intra-Articular Efficacy of Low Dose Corticosteroid through a Biopolymeric Matrix: An In Vivo Model of Osteoarthritis. Cells. 2020;9(7):1571. Published 2020 Jun 28. doi:10.3390/cells9071571

5.Paniagua N, Sánchez-Robles EM, Bagues A, Martín-Fontelles MI, Goicoechea C, Girón R. Behavior and electrophysiology studies of the peripheral neuropathy induced by individual and co-administration of paclitaxel and oxaliplatin in rat. Life Sci. 2021;277:119397. doi:10.1016/j.lfs.2021.119397

6.Carmon I, Zecharyahu L, Elayyan J, et al. HU308 Mitigates Osteoarthritis by Stimulating Sox9-Related Networks of Carbohydrate Metabolism. J Bone Miner Res. 2023;38(1):154-170. doi:10.1002/jbmr.4741

7.Phie J, Krishna SM, Kinobe R, et al. Effects of quercetin on exercise performance, physical activity and blood supply in a novel model of sustained hind-limb ischaemia. BJS Open. 2021;5(1):zraa059. doi:10.1093/bjsopen/zraa059

8.Krishna SM, Omer SM, Li J, Morton SK, Jose RJ, Golledge J. Development of a two-stage limb ischemia model to better simulate human peripheral artery disease. Sci Rep. 2020;10(1):3449. Published 2020 Feb 26. doi:10.1038/s41598-020-60352-4

9.Gao W, Shen L, Long DD, et al. Angiotensin II type 2 receptor pharmacological agonist, C21, reduces the inflammation and pain hypersensitivity in mice with joint inflammatory pain. Int Immunopharmacol. 2022;110:108921. doi:10.1016/j.intimp.2022.108921

Leuchtweis J, Segond von Banchet G, Eitner A, Ebbinghaus M, Schaible HG. Pain-related behaviors associated with persistence of mechanical hyperalgesia after antigen-induced arthritis in rats. Pain. 2020;161(7):1571-1583. doi:10.1097/j.pain.0000000000001852